Toll like receptor是先天免疫的重要感受元件之一。TLR家族的均位于细胞的膜表面，其中TLR1、2、4、5、6位于细胞质膜表面，识别细菌与真菌特定的成分，TLR3、7、8、9、13位于胞内体的膜表面，识别DNA或RNA。
TLR是一类高度保守的I-型膜蛋白受体，其胞外端结构具有LRR特征(leucine rich repeat)，胞内端与IL-1受体高度类似。在信号传导方面，当识别病原体携带的特征后，TLR会与下游的接合蛋白MyD88结合，从而促进下游的IRAK4对IRAK1的磷酸化。磷酸化后的IRAK1能够与TRAF6结合激活下游的MAPK以及因子。
由于TLR的不正常激活有可能会导致炎症反应，引起其信号传导过程应该会受到严格的调控。TREM与TREML是十分相似的膜蛋白型受体，他们都含有一个免疫球蛋白型的胞内端结构。之前的研究发现TREM家族的蛋白参与了TLR信号传递过程，而TREM的配体至今还不清楚。
最近，来自哈佛医学院免疫中心的Terry K Means课题组在《nature immunology》发表了他们对TREML4参与TLR7信号传导的机制研究。
首先，作者利用shRNA的方式对小鼠巨噬细胞系RAW264.7中的一系列基因进行了"高通量"的"随机"沉默处理，之后，分别将处理过的细胞进行TLR 配体(gardiquimod)的刺激。之后，根据细胞表达TNF-a以及NF-kB的水平进行流式分选分为两组。之后通过PCR的方法对这些细胞中插入的shRNA进行了鉴定。通过分析，作者找到了在两组细胞中插入的有差异的shRNA。在这些shRNA中，除了已知的对TLR7信号有影响的的靶向shRNA之外，作者发现了一类没有被研究过的蛋白-TRAML-4。之后，作者将TRAML4进行单独沉默，之后分析了在gardiquimod刺激下其TNF-a与NF-kB的表达差异。结果显示：当TRAM-4被后，TNF-a与NF-Kb的表达均受到了明显的。而对于其它TLR配体的刺激(比如LPS等)，TREM-4的缺失则影响不大。这一结果说明TREML-4能够性地促进TLR-7的信号传递。
进一步，作者比较了野生型与TREML-4缺失突变的小鼠巨噬细胞TLR-7信号的差异。结果与上述相同。同时，作者还发现TREML-4也能够促进TLR-9以及TLR-13的信号传递。另外，作者通过体内注射gardiquimod的实验也验证了上述结果。
之后，作者比较了野生型小鼠与突变体小鼠巨噬细胞在体外进行gardiquimod刺激后下游信号的活化情况。结果显示，相比于野生型，突变体细胞中MAPK与STAT-4的磷酸化受到了明显的。另外，野生型细胞在受到刺激后，MyD88会与TLR-7发生相互作用，而这一现象在突变体细胞中明显减弱了。
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