1)将2ml 含相应抗生素的LB加入到容量为15ml 并通气良好(不盖紧)的试管中,然后接入一单菌落,于30℃ 剧烈振摇下培养过夜.
2)将1.5ml 培养物倒入微量离心管中,用微量离心机于4℃以12000g 离心30 秒,将剩余的培养物贮存于4℃ .
3)吸去培养液,使细菌沉淀尽可能干燥.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,轻缓抽吸,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽可能使吸头远离细菌沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴.
溶液I可成批配制,每瓶约100ml, 在10lbf/in2(6.895×104Pa) 高压下蒸气灭菌15分钟,贮存于4℃.须确使细菌沉淀在溶液I中完全分散,将两个微量离心管的管底部互相接触震荡,可使沉淀迅速分散.
盖紧管口,快速离心管5次,以混合内容物.应确保离心管的整个内表面均与溶液Ⅱ接触.不要振荡,将离心管放置于冰上.
盖紧管口,将管倒置后和地振荡10秒钟溶液 Ⅲ 在粘稠的细菌裂解物中分散均匀,之后将管置于冰上3-5分钟.
5)可做可不做：加等量酚:氯念, 振荡混匀, 用微量离心机于4℃ 以12000g 离心2分钟,将上清转移到另一管中.有些工作者认为不必用酚:氯仿进行抽提,然而由于一些未知的原因,省略这一步,往往会得到可耐受酶切反应的DNA.
8)小心吸去上清液,将离心管倒置于一张纸巾上,以使所有液体流出.再将附于管壁的液滴除尽.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽量使吸头远离核酸沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管壁的液滴. 9)用 1ml70% 乙醇于4 ℃ 洗涤双链DNA 沉淀,按步骤8)所术方法去掉上清,在空气中使核酸沉淀干燥10分钟.
i. 此法制备的高拷贝数质粒(如X f3 或pUC),其产量一般约为：每毫升原细菌培养物3-5μg .
ii .如果要通过酶切割反应来分析DNA,可取1μl DNA 溶液加到另一含8μl 水的微量离心管内,加1μl 10× 酶缓冲液和1单位所需酶, 在适宜温育1-2小时.将剩余的DNA 贮存于-20 ℃ .
8)小心吸去上清液,将离心管倒置于一张纸巾上,以使所有液体流出.再将附于管壁的液滴除尽.除去上清的简便方法是用一次性使用的吸头与真空管道相连,轻缓抽吸,并用吸头接触液面.当液体从管中吸出时,尽可能使吸头远离核酸沉淀,然后继续用吸头通过抽真空除去附于管的液滴.
10)按步骤 8)所述再次轻轻地吸去上清,这一步操作要格外小心,因为有时沉淀块贴壁不紧,去除管壁上形成的所有乙醇液滴,打开管口,放于室温直至乙醇挥发殆尽,管内无可见的液体(2-5)分钟.
注：当从表达内切核酸酶A的大肠杆菌株(endA+ 株,如 HB101)中小量制粒尤其DNA时,煮沸法.因为煮沸步骤不能完全灭活内切核酸酶A,以后在Mg2+ 存在下温育(V 中用酶时)质粒DNA可被降解. 在上述方案的步骤9之间增加一步,即用酚：氯仿进行抽提,可以避免这一问题.
裂解和煮佛法都极其可靠,重复性也很好,而且一般没有会么麻烦.多年来,在我们实验室中日常使用这两种方法的过程中,只碰到过两个问题：
1)有些工作者首次进行小量制备时,有时会发现质粒DNA不能被酶所切割,这几乎总是由于从细菌沉淀或从核酸沉淀中去除所有上清液时注意得不够.大多数情况下,用酚：氯仿对溶液进行抽提可以去除小量备物中的杂质.如果总是依然存在,可用离心柱层析注纯化DNA.
2)在十分偶然的情况下,个别小时制备物会出现无质粒DNA的现象.这几乎肯定是由于核酸沉淀颗粒已同乙醇一起被弃去.
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