ELISA:ELISA中非性显色原因分析

  摘要:影响ELISA中非性显色的原因很多,本文就这一原因作一简要分析,以便得到更准确、可靠的实验结果.

  【摘要】:影响ELISA中非性显色的原因很多,如试剂盒性、检验标本中含酶标记物的干扰物,操作过程中的问题.本文就这一原因作一简要分析,以便可以通过以上措施把非显色降至最低限度,从而提高检测的性,并得到更准确、可靠的实验结果.

  酶联免疫吸附试验(ELISA)自1971年自问世以来,以其性高,性强,操作简便、安全,而广泛应用于临床诊断,开创了免疫学诊断的新.但同其它免疫诊断方法一样酶免试剂在它的研究、生产及使用中常常会碰到非性问题,本文就在实验过程中产生的一些原因及如何采取一些措施,消除非性显色作一分析.

  1.1 固相载体的选择.ELISA中常用的固相载体有微量滴定板、小珠和小试管三种,以微量滴定板最为常见[1].它具有良好的吸附性能,孔底透明度高,空白值低,各板之间、同一板各孔之间性能相近.聚苯乙烯ELISA板由于原料的不同和制作工艺的差别,各产品的质量差异很大.因此,在选择试剂盒同时要对其使用的微孔板型号进行认证,评估.

  1.2包被物的纯度.在酶联免疫测定尤其是间接ELISA中,试剂的性取决于使用抗原的纯度.目前由于技术条件的,包被用抗原或抗体的纯度不可能达到100%,所以有些非性显色不可避免,只能尽可能提高纯度,提高性.目前使用的包被抗原一般为合成多肽抗原.

  1.4 封闭.是ELISA中重要的一步,目的是封闭固相载体表面尚未被所占据的空隙[2],减少后续步骤中非性蛋白的干扰.

  2.1内源性干扰物:类风湿因子(RF)、黄疸等,类风湿因子是可作用于多种动物以及人IgGFc段的自身抗体,多数为IgM类,能充当抗原成分与固相及酶标抗体反应,从而呈现非性显色.

  2.2 外源性干扰物,常常因样品采集、贮存、处理不当造成如样品溶血,被细菌污染,标本凝集不全等.溶血标本,红细胞溶解破裂,出血红素形成,而血红素中的铁卟啉是过氧化物酶的类似物,以HRP为标记的ELISA测定中,溶血标本可能会增加非性显色.如有细菌污染,菌体中可能含有内源性HRP(辣根过氧化酶)[2],有国内报道酶免HBsAg试剂检测溶血标本时可造成假阳性[3].如在冰箱中保存过久,其中的IgG可发生聚合,在间接法ELISA中可使本底加深[2].因此,血标本在采集处理时应小心,在冰箱中保存不易过久.

  对于间接ELISA标本一般都要进行稀释,如果加样不准就会造成误差,尤其当稀释倍数大时,很小的绝对误差,会导致较大的相对误差,使阴性(或弱阳性)标本呈阳性(或阴性).加样时应将所加物加在ELISA板孔的底部,避免加在孔壁上部,并注意不可溅出,不可产生气泡.目前,大部分血站都已使用全自动酶免加样系统处理标本,可较好地避免以上误差.

  在ELISA确的洗涤是得到可重复结果的关健一步,应引起操作者重视.无论是手工操作还是机器操作,得出不正确的结果常与不正确的洗涤有关,ELISA就是靠洗涤来达到分离游离和结合的酶标记物的目的.通过洗涤以消除残留在板孔中没能与固体抗原或抗体结合的物质,以及在反应过程中非性吸附于固相载体的干扰物质.

  每种试剂都有其最佳反应模式,其中温度和温育时间控制是重要因素.因孵育温度高,反应时间长,会造成整板本底高,阳性率高.温育一般用湿盒或水浴,反应板不宜叠放,以各板温度都能迅速平衡,为避免蒸发,板上应加盖.

  作为记录测定结果的仪器,酶标仪的性能稳定与否,决定结果的可靠度.首先酶标仪应定期进行保养,对滤光片要定期校正;其次酶标仪波长设置要正确,最好使用双波长,一个检测波长,一个参比波长,以消除微孔板底部划痕、不平、指印或液面高度差异造成的光干扰.此外,在用酶标仪读数时最好先擦试微孔板底部并压平板条.由于各种酶标仪性能有所不同,使用中应详细阅读说明书

  综上所述,由于酶联免疫吸附技术目前在技术上缺乏标准化,尽管目前国际上以及我国有了部分标准血清或参比血清(血清盘).但由于受方及技术条件的,在酶联吸附测定中有时不可避免的会出现一定的非性,但我们可以通过以上措施把非性显色降至最低限底,从而提高检测的性,并得到更准确、可靠的实验结果.

  [2] 郑怀充,韩松,主编.临床检验.ELISA指南[M].:医科大学、协和医科大合出版社,1994.40.

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