摘要：ELISA是一种免疫测定.是应用免疫学技术测定标本的方法.在临床检验中主要通过抗原抗体反应检测体液中的抗体或抗原性物质.
ELISA是一种免疫测定.免疫测定(immunoassay,IA)是应用免疫学技术测定标本的方法.在临床检验中主要通过抗原抗体反应检测体液中的抗体或抗原性物质.
抗原是能在机体中引起性免疫应答的物质.抗原进入机体后,可刺激机体产生抗体和引起细胞免疫.在免疫测定中,抗原是指能与抗体结合的物质.能在机体中引起抗体产生的抗原多为量大于5000的蛋白质.小化合物在与大蛋白质结合后能引起机体产生性抗体的,称为半抗原(hapten).例如某些激素、药物等.抗原的反应性取决于抗原决定簇(antigenic determinant),或称为表位(epitope).一个抗原可带有不同的决定簇.
重链和轻链的N端的氨基酸排列顺序因各种抗体而异,称为可变区,分别用VH和VL表示.两者构成抗体的抗原结合部位,只与相应的抗原决定簇匹配,发生性结合(见图),是抗体性结合抗原的结构基础.
IgG可被木瓜蛋白酶分解为三个区段,其中两个相同的区段称抗原结合片段(Fab).每个Fab都保存结合抗原的能力,但只有一个抗原结合位点,是单价的,与抗原结合后不出现凝集或沉淀.另一区段称Fc段,无抗体活性,但具有IgG特有的抗原性.
IgG可被胃蛋白酶分解为两个片段,一个Fab双体,称F(ab’)2,能和两个相同的抗原结合;另一片段类似Fc,随后被分解成小多肽,无生物活性.
IgM是由五个单体组成的五聚体,含10个重链和10个轻链,具有10个抗原结合价,由于空间的影响,只表现为五个抗原结合价.IgM量约为900000,IgG量约为150000.
机体被微生物感染后,先产生IgM抗体,然后产生IgG抗体.经过一段时间,IgM抗体量逐渐减少而消失,而IgG抗体可长期存在,在疾病痊愈后可持续数年之久.
IgM抗体一般为性抗体,具有免疫性.因此IgM抗体的测定,对某些传染病如甲型肝炎有较高的临床诊断价值.
机体受抗原刺激后,B淋巴细胞产生相应的抗体.含有抗体的血清称为抗血清(antiserum).每一系B细胞只产生针对某一抗原决定簇的抗体.如将多种抗原或含有多个抗原决定簇的抗原注入机体,则将由多系的B细胞产生相应的多种抗体,这些抗体均存在于免疫血清中.免疫测定中所用的抗血清一般用抗原免疫兔、羊或马制得.产生抗体的B细胞可在体外与繁殖力强的肿瘤细胞融合成杂交瘤细胞.将单个杂交瘤细胞分离,在体内或体外培养而分泌的抗体单克隆抗体(monoclonal antibody,McAb或Mab).单克隆抗体仅针对一种抗原决定簇,具有很高的性.单克隆抗体通常用抗原免疫小鼠制备.将免疫的脾细胞(含产生抗体的B细胞)与小鼠肿瘤细胞融合,分离杂交瘤细胞,接种于小鼠腹腔,产生的腹水中含有浓度很高的单克隆抗体.
抗原与抗体结合形成抗原抗体复合物的过程是一种动态平衡,其反应式为:Ag+Ab→Ag·Ab..抗体的亲和力(affinity)是抗原抗体间的固有结合力,可以平衡K表示:K=[Ag·Ab]/[Ag][Ab].Ag·Ab的解离程度与K值有关.高亲和力抗体的抗原结合点与抗原的决定簇在空间构型上非常适合,两者结合牢固,不易解离.解离后的抗原或抗体均能保持原有的结构和活性,因此可用亲和层析法来提纯抗原或抗体.在抗血清中,性的IgG抗体仅占总IgG中的极小部分.用亲和层析法提取的性抗体,称为亲和层析纯抗体,应用于免疫测定中可得到更好的效果.
在恒定量的抗体中加入递增量的抗原形成抗体复合物(沉淀)的量见图1-4.曲线的高峰部分是抗原抗体比例最合适的范围,称为等价带(zone of equivalence).在等价带前后分别为抗体过剩带和抗原过剩带.如果抗原或抗体极度过剩,则无沉淀物形成,在免疫测定中称为带现象(zone phenomenon).抗体过量称为前带(prezone),抗原地过量称为后带(postzone).在用免疫学方法测定抗原时,应使反应系统中有足够的抗体量,否则测得的量会小于实际含量,甚至出现假阴性.
抗原抗体的结合实质上只发生在抗原的抗原决定簇与抗体的抗原结合位点之间.由于两者在化学结构和空间构型上呈互补关系,所以抗原抗体反应具有高度的性.例如乙肝病毒中的表面抗原(HBsAg)、e抗原(HBeAg)和核心抗体(HBcAg),虽来源于同一病毒,但仅与其相应的抗体结合,而不与另外两种抗体反应.抗原抗体反应的这种性使免疫测定能在一非常复杂的蛋白质化合物(例如血清)中测定某一特定的物质,而不需先分离待检物.
但是这种性也不是绝对的.假使两种化合物有着部分相同的结构,在抗原抗体反应中可出现交叉反应.例如:绒毛膜促性腺激素(hCG)和黄体生成激素(LH)均由α和β两个亚单位组成,其结构的不同处在β亚单位,而两者的α亚单位是同类的.用hCG免疫动物所得的抗血清中含有抗α-hCG和抗β-hCG两种抗体,抗α-hCG抗体将与LH发生交叉反应.在临床检验中,如用抗hCG抗血清作为妊娠诊断试剂检定尿液中hCG,只能用于hCG浓度较高的试验,否则妇女生排泄入尿液中的微量LH将与之发生交叉反应.因此在作为早孕诊断(度应达到50mIu/mlhCG)的实际中必须应用只对hCG的抗β-hCG,以避免与其它激素的交叉反应的发生.
在测定血清中某一物质的含量时,化学比色法的度为mg/ml水平,酶反应测定法的度约为5~10μg/ml,免疫测定中凝胶扩散法和浊度法的度与酶反应法相仿.标记的免疫测定的度可提高数千倍,达ng/ml水平.例如,用放射免疫测定法或酶免疫测定法测定HBsAg,其度可达0.1ng/ml.
由于各种抗原成份,包括小的半抗原,均可用以制备性的抗血清或单克隆抗体,利用此抗体作为试剂就可检测标本中相应的抗原,因此免疫测定的应用范围极广,在临床检验中可用于测定:
如上所述,免疫测定是一种很的测定方法,抗原抗体反应后直接测定形成的沉淀或浊度,度可达5~10 μg/ml,但在临床检验中,某些待测物在标本中的含量远低于这一水平,因此要寻找增加度的方法.标记的免疫测定是将检测试剂中的抗原或抗体用可微量测定的物质加以标记,通过测定标记物来提高度.在放射免疫测定和酶免疫测定中,标记物分别为放射性核素和酶,最后用测定放射性和酶活力来计算待检物的量,度可比直接测定沉淀物提高数百至数千倍.在标记免疫测定中,一般加入过量的标记试剂以与待测物彻底反应.以标记抗体(Ab※)检测抗原(Ag)为例,反应式如下:Ag+ Ab※ → AgAb※+ Ab※.在反应产物中有与Ag结合的Ab※和游离和Ab※,如不将两者分离而测定标记物,测得的结果将为两者之和.因此,游离标记物与结合标记物的分离是标记免疫测定中的重要步骤.可采用多种手段,固相载体是其中之一.如将抗原或抗体包被在固相载体上,然后再与标记的抗原或抗体直接反应,结合的标记物被固定在载体上,而游离的标记物留于溶液中.这样可以通过洗涤将游离的Ab※除去,结合标记物的测定可在固相上进行.
酶免疫测定(enzyme immunoassay)可分为均相(homogenous)和非均相(heterogenous)两种类型.在均相EIA中可不需进行游离的和结合的标记物的分离而直接测定标记物.例如在某种条件下,抗原抗体反应后形成的酶标记抗原抗体复合物中的酶失去其对底物作用的活力,因而测出的酶活力直接反映游离的酶标记物.均相EIA在临床检验中较少应用.非均相EIA需先进行游离的和结合的标记物的分离.如前所述,固相载体可用作一种分离手段.这种固相酶免疫测定方法在1971年最初建立时称为酶联免疫吸附剂测定(enzyme linked immunosorbent assay),简称ELISA,在国内有译作酶联免疫吸附试验或酶标,已习用.
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