实验动物基本操作:常见实验动物的捉持和给药方法

  右手提起鼠尾,放在粗糙物(如鼠笼),轻向后拉其尾;此时小鼠前肢抓住粗糙面不动;用左手拇指和食指捏住双耳及头部皮肤,无名指、小指和掌心夹其背部皮肤及尾部,便可将小鼠完全固定.腾出右手,可以给药.

  此外,也可单手捉持,难度较大,但速度快.先用拇指和食指抓住小鼠尾巴,用小指、无名指和手掌压住尾根部,再用腾出的拇指、食指及中指抓住鼠双耳及头部皮肤而固定.

  小鼠固定后,使腹部朝上,颈部拉直,右手用带灌胃针头的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从插入口腔,再从舌背进沿上腭进入食道.若遇阻力,应退出后再插,切不可用力过猛,防止损伤或误入气管导致动物死亡.灌胃量一般不超过0.25ml/10g.

  抓鼠方法同上,右手持注射器(5~6号针头),从耻骨联合上一侧向头端以30度角刺入腹腔(应避开膀胱).可先刺入皮下2~3mm,再刺入腹腔,以防药液外漏.针头刺入部位不宜太高太深,以免刺破内脏.注射量一般为0.1~0.25ml/10g.

  一般两人合作.一人左手抓住小鼠头部皮肤,右手拉住鼠尾;另一人左手提高背部皮肤,右手持住注射器(针头号同上),将针头刺入提起的皮下.若一人操作,左手小指和手掌夹住鼠尾,拇指和食指提起背部皮肤,右手持注射器给药.一般用量为0.05~0.25ml/10g.

  两人合作时,一人抓鼠方法同上,另一人左手拉直一侧后肢,右手持注射器,注射部位多选后腿上部外侧(针头号同上).如一人操作,抓鼠方法类似腹腔注射,只是药液注射在肌肉内.每腿的注射量不宜超过0.1ml.

  将小鼠置于待置的固定筒内,使鼠尾外露,并用酒精或二甲苯棉球涂擦,或插入40℃~50℃温水中浸泡片刻,使尾部血管扩张.左手拉尾,选择扩张最明显的血管;右手持注射器(4~5号针头),将针头刺入血管,缓慢给药.如推注有阻力而且局部变白,说明针头不在血管内,应重新插入.穿刺时宜从近为尖部 1/3处静脉开始,以便重复向上移位注射.一般用药量为0.1~0.2ml/10g,不宜超过0.5ml/10g.

  一人操作时,将兔放入固定箱或试验台上,选好耳缘静脉(在耳背的下缘),拔除局部的毛,用酒精棉球涂擦,并用食指轻弹耳壳,使血管扩张.用左手的食指和中指夹住耳根部,拇指和无名指夹住耳尖部拉直;右手将抽好药液的注射器(6~7号针头)刺入血管,用拇指和食针头和兔耳固定,将药液推入.如针头在血管内,推注轻松,并可见血液被药液冲走;如不在血管内,则推注有阻力,耳局部变白或肿胀,应立即拔除重新注射.注射完毕,则用手指或棉球压在针眼上,再拔出针头,并继续按压片刻,防止出血.如两人操作,一人夹住兔子,右手血管,压住耳根部使血管充盈,另一人注射给药.

  两人合作,一人坐下,两腿夹住兔身,左手固定兔耳,右手抓住前肢;另一人将开口器从嘴角插入口腔,压在舌上,并向后翻转几下,使兔舍伸直.取8号导尿管由开口器中部的小孔插入食道约15cm.如插入气管, 兔子则剧烈挣扎、呼吸困难.也可将导尿管外端浸入水中,不见气泡则表示插在胃中.插好后,把注射器接在导尿管上,将药液推入.再注入少量空气,使导尿管中所有药液进入胃内.灌完药液后,先慢慢抽出导尿管,再取出开口器.一般用药量为5~20ml/ ㎏.

  基本同小白鼠,唯针头可稍大(6~7号),给药量可稍多,一般腹腔为1.0~5.0ml/㎏,肌肉、皮下为0.5~1.0ml/㎏.

  将兔固定在兔箱内或夹在腋下,左手拇指和食指拉开兔下眼睑成杯状,中指压住眼内眦,以防药液由鼻泪管流入鼻腔内而被吸收.滴入药液1~2滴,将下眼睑向上合拢,使眼球充分接触药液.约1min后将手放开,让药液自然流出.

  大白鼠比小白鼠性强,不要突然袭击去抓它,以免被咬伤.捉持前先戴上手套,右手夹住尾巴,放在粗糙面上;左手拇指和食指捏住颈及前颈部,其余三指握住整个身体.有力适当,过松容易而被咬伤,但用力过大会使其窒息死亡.

  皮下、肌肉及腹腔注射方法与小白鼠类似,只是用药量稍大.灌胃方法与兔类似.静脉注射方法与兔相似,可选后脚掌外侧静脉、外颈部静脉、或作股静脉切开注射.作后脚掌外侧静脉注射时,有一人捉豚鼠并固定一条后腿,另一人剪去注射部位的毛,用酒精棉球涂擦后脚掌外侧的皮肤,使血管显露.再将连在注射器上的小儿头皮静脉输液针头刺入血管.作外颈静脉注射时需先剪去一点皮肤,使血管,然后将针头刺入.豚鼠的静脉灌壁比较脆弱,操作时需特别小心.

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