在动物实验中,被毛有时会影响实验操作与观察,因此必须除去.除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等.
剪毛法是将动物固定后,先用蘸有水的纱布把被毛浸湿,再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛.不可用手提起被毛,以免剪破皮肤.剪下的毛应集中放在一容器内,防止到处飞扬.给狗、羊等动物采血或新生乳牛放血制备血清常用此法.
剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法.如动物被毛较长,先要用剪刀将其剪短,再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透,然后再用剃毛刀除毛.本法适用于外科手术区.
脱毛法是用化学药品脱去动物被毛的方法.首先将被毛剪短,然后用棉球蘸取脱毛剂,在所需部位涂一薄层,2～3分钟后用温水洗去脱落的被毛,用纱布擦干,再涂一层油脂即可.
适用于兔、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1. 硫化钠3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加适量水调成糊状;2. 硫化钠8g,淀粉7g,糖4g,甘油5g,硼砂1g,加水75ml;3. 硫化钠8g溶于100ml水中.
在动物实验中,为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化,常需要将药物注入动物体内.给药的途径和方法多种多样,可根据实验目的、实验动类和药物剂型、剂量等情况确定.
注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤,右手持注射器将针头刺入,固定后即可进行注射.一般小鼠在背部或前肢腋下,大鼠在背部或侧下腹部;豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位;兔在背部或耳根部注射;蛙可在脊背部淋巴囊注射;狗多在大腿外侧注射,拔针时,轻按针孔片刻,防药液逸出.
此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应. 如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内,观察其消失速度和局部血液循环变化,作为皮肤血管通透性观察指标之一.方法是：将动物注射部位的毛剪去,消毒后,用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内,然后使针头向上并再稍刺入,即可注射药液.注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘.
当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,常采用肌肉注射.肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位,多选臀部.
注射时针头要垂直快速刺入肌肉,如无回血现象即可注射.给大、小鼠作肌肉注射时,选大腿外侧肌肉进行注射.
先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒,然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下,沿皮下向前推进约0.5厘米,再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔,此时有落空感,回抽无肠液、尿液后,缓缓推入药液.此法大小鼠用的较多.
小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射.鼠尾静脉共有3根, 左右两侧和背侧各1根,两侧尾静脉比较容易固定,故常被采用.操作时,先将动物固定在尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75%酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化,以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,使静脉充盈,注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针.开始注射时宜少量缓注,如无阻力,表示针头已进入静脉,这时用左手指将针和尾一起固定起来,解除对尾根部的后,便可进行注射.如有白色皮丘出现,说明未穿刺入血管,应重新向尾部方向移动针头再次穿刺.注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血.如需反复注射,尽量从尾的末端开始. 一次的注射量为每10g体重0.1-0.2ml.
兔的静脉注射：一般采用外耳缘静脉,因其表浅易固定.注射部位除毛,用75%的酒精消毒,手指轻弹兔耳,使静脉充盈,左手食指和中指夹住静脉的近心端,拇指绷紧静脉的远心端,无名指及小指垫在下面,右手持注射器,尽量从静脉的远端刺入血管,移动拇指于针头上以固定,放开食、中指,将药液注入,然后拔出针头,用手针眼片刻以止血.
狗的静脉注射：狗的静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧的小隐静脉.注射部位除毛后,在静脉血管的近心端用橡扎紧,使血管充盈,从静脉的远心端将注射针头平行血管刺入,回抽注射器针栓,如有回血,即可放开像,将药液缓缓注入.
蛙类常采用此法,其皮下有数个淋巴囊,注入药物甚易吸收.腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径.一般多选用腹部淋巴囊给药.注射时将针头从蛙大腿上端刺入,经大腿肌层入腹壁肌层,再进入腹壁皮下,即进入淋巴囊,然后注入药液.
把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取.此法优点在于简单方便,缺点是不能剂量准确.一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验,制造某些与食物有关的人类疾病动物模型.
在急性实验中,多采用灌胃法.此法剂量准确.灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内.灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成.小鼠的灌胃针长约4～5cm,直径为1mm,大鼠的灌胃针长约6～8cm,直径约1.2mm.灌胃针的尖端焊有一小圆金属球,金属球为中空的.焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道.针头金属球端弯曲成20°左右的角度,以适应口腔、食道的生理弯曲度.
鼠类的灌胃法：用左手固定鼠,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的口腔插入,鼠的头部,使口腔与食道成一直线,将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道,可感到轻微的阻力,此时可略改变一下灌胃针方向,以刺激引起吞咽动作,顺势将药液注入.一般灌胃针插入小鼠深度为3～4cm,大鼠或豚鼠为4～6cm.常用灌胃量小鼠为0.2～1ml,大鼠1～4ml,豚鼠1～5ml.
狗、兔的灌胃法：先将动物固定,再将开口器的小孔插入动物口中,再慢慢沿上鄂壁插入食道,将灌胃管的外端浸入水中,如有气泡逸出,则说明灌胃管误入气管,需拔出重插.插好后,将注射器连于灌胃管将药液推入.灌胃结束后,先拔出灌胃管,再拿出开口器.一次灌胃能耐受的最大容积兔为80～100ml,狗为 200 ～250ml.
呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药.如实验时给动物作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等,特别在毒理学实验中应用更为广泛.
为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等,均需采用经皮肤给药方法.如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后,将一定的药液涂在皮肤上,药液经皮肤吸收.
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