实验研究中,经常要采集实验动物的血液进行常规质量检测、细胞学实验或进行生物化学分析,故必须掌握正确的采集血液的技术.采血方法的选择,主要决定于实验的目的和所需血量以及动类.
需血量很少时常用本法,如作红、白细胞计数、血红蛋白测定、制作血涂片等可与此法.动物麻醉后,将尾尖剪去约5mm,从尾部向尾尖部按摩,血即从断端流出.也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出.如不麻醉,采血量较小.采血结束后,消毒、止血.用此法每只鼠可采血10余次.小鼠可每次采血约0.1ml,大鼠约0.4ml.
穿刺采用一根特制的长7～10cm硬的玻璃取血管,其一端内径为1 ～1.5mm,另一端逐渐扩大,细端长约1cm即可,将取血管浸入1%肝素溶液,干燥后使用.采血时,左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定,并轻轻颈部两侧,阻碍静脉回流,使眼球充分外突,提示眼眶后静脉丛冲血.右手持取血管,将其尖端插入内眼角与眼球之间,轻轻向眼底方向刺入,当感到有阻力时即停止刺入,旋转取血管以切开静脉丛,血液即流入取血管中.采血结束后,拔出取血管,放松左手,出血即停止.用本法在短期内可重复采血.小鼠一次可采血0.2～0.3ml,大鼠一次可采血0.5～1.0ml.
将鼠麻醉,剪去一侧颈部外侧被毛,作颈静脉或颈动脉分离手术,用注射器即可抽出所需血量.大鼠多采用股静脉或股动脉,方法是：大鼠经麻醉后,剪开腹股沟处皮肤,即可看到股静脉,把此静脉剪断或用注射器采血即可,股动脉较深需剥离出,再采血.
此法常用于鼠类大量采血.采血时,用左手固定动物,眼球,尽量使眼球突出,右手用镊子或止血钳迅速摘除眼球,眼眶内很快流出血液.
先将豚鼠耳消毒,用刀片沿血管方向割破耳缘,切口约长0.5cm,在切口边缘涂上20%的柠檬酸钠溶液,防治血凝,则血可自切口处流出.此法采血每次可采0.5ml.
固定豚鼠,将其右或左后肢膝关节伸直,脚背消毒,找出足静脉,左手拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手将注射针刺入静脉,拔针后立即出血.
用手指触摸,选择心跳最明显的部位,把注射针刺入心脏,血液即流入针管.心脏采血时所用的针头应细长些,以免发生采血后穿刺孔出血.
将兔固定,拔去耳缘静脉局部的被毛,消毒,用手指轻弹兔耳,使静脉扩张,用针头刺耳缘静脉末端,或用刀片沿血管方向割破一小切口,血液即流出.本法为兔最常用的采血方法,可多次重复使用.
在兔耳中央有一条较粗的、颜色较鲜红的中央动脉.用左手固定兔耳,右手持注射器,在中央动脉的末端,沿着与动脉平行的向心方向刺入动脉,即可见血液进入针管.由于兔耳中央动脉容易痉挛,故抽血前必须让兔耳充分充血,采血时动作要迅速.采血所用针头不要太细,一般用6号针头,针刺部位从中央动脉末端开始,不要在近耳根部采血.
使家兔仰卧,穿刺部位在第三肋间胸骨左缘3mm处, 针头刺入心脏后,持针手可感觉到兔心脏有节律的跳动.此时如还抽不到血,可以前后进退调节针头的,注意切不可使针头在胸腔内左右摆动,以防弄伤兔的心、肺.
后肢外侧小隐静脉位于后肢胫部下三分之一的外侧浅表皮下,由前侧方向后行走.采血时,将动物固定,局部剪毛、消毒,采血者左手紧握剪毛区上部或扎紧止血带,使下部静脉充血,右手用连有6号或7号针头的注射器刺入静脉,左手放松,已适当速度抽血即可.
前两种方法需技术熟练,且不适于连续采血.大量或连续采血时,可采用颈静脉采血,方法同小鼠、大鼠的颈静脉采血方法.
本法为采取动脉血最常用的方法.操作简便,稍加训练的狗,在状态下将狗卧位固定于狗解剖台上.伸展后肢向外伸直,腹股沟三角动脉搏动的部位,剪毛、消毒,左手中指、食指探模股动脉跳动部位,并固定好血管,右手取连有5号半针头的注射器,针头由动脉跳动处直接刺入血管,若刺入动脉一般可见鲜红血液流入注射器,有时还需微微转动一下针头或上下移动一下针头,方见鲜红血液流入.有时可能刺入静脉,必须重抽.抽血毕,迅速拔出针头,用干药棉止血2-3分钟.
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